Als transkriptionelle Interferenz (TI) wird die direkte Unterdrückung eines Transkriptionsprozesses durch einen anderen in cis bezeichnet. TI ist ein weit verbreiteter Mechanismus zur Transkriptionsregulation, der durch Transkription von konvergenten, divergierenden oder im Tandem angeordneten Promotoren hervorgerufen werden kann. Bei Säugetieren ist die TI auch an der Regulation der Expression von Genen beteiligt, die der genomischen Prägung unterliegen. In Neuronen der Maus und des Menschen wird das geprägte Gen Ube3a ausschließlich vom maternal ererbten Allel exprimiert. Auf dem paternalen Allel überlappt die Transkription der langen nicht-kodierenden RNA Snhg14 mit dem Ube3a-Gen und führt durch TI zur monoallelischen Ube3a-Expression. Im Rahmen dieser Arbeit erfolgte die Etablierung eines Zellkulturmodells, welches die Untersuchung von TI mit beliebigen humanen Promotoren erlaubt. Hierfür wurden die Promotoren der Gene UBE3A, HBA2 und MSH2 als Testpromotoren ausgewählt und ihre Aktivität zunächst mittels Luciferaseaktivitätsmessungen in humanen, transient transfizierten Flp-In™-T-REx™-293-Zellen bestimmt. Für die Etablierung des Zellkulturmodells wurden die Testpromotoren zusammen mit dem EGFP-Gen stromabwärts eines induzierbaren CMV-Promotors integriert, welcher die Expression des überlappenden β-Globin-Transkripts Exon_2/3 steuert. Die Testpromotoren UBE3A und HBA2 wurden dabei in konvergenter Richtung zum CMV-Promotor inseriert, während der MSH2-Promotor in Tandem-Orientierung positioniert wurde. Durch die Zugabe von Doxycyclin für drei, sieben, zehn und 14 Tage wurde der CMV-Promotor in der jeweiligen stabilen Flp-In™-T-REx™-293-Zelllinie induziert und die Auswirkungen auf die Exon_2/3- und EGFP-Expression mittels qRT-PCR analysiert. Dabei zeigte sich in allen untersuchten Zelllinien und zu allen Zeitpunkten eine Zunahme der Exon_2/3-Expression, da dieses Transkript durch den mit Doxycyclin induzierbaren CMV-Promotor gesteuert wird. Die EGFP-Expression, welche in dem etablierten Zellkulturmodell durch den jeweiligen Testpromotor kontrolliert wird, war in diesen Zellen hingegen reduziert. Die Reduktion der EGFP-Expression erfolgte durch TI und konnte auch durch eine Abnahme der EGFP-Fluoreszenz mittels Mikroskopie beobachtet werden. Der stärkste TI-Effekt wurde mit dem integrierten UBE3A-Testpromotor bestimmt, gefolgt von den Promotoren von HBA2 und MSH2. Die Ergebnisse zeigen, dass sich das etablierte Zellkulturmodell für die Untersuchung von TI eignet und die Stärke des beobachteten TI-Effekts abhängig vom integrierten Promotor ist. Zudem ergaben weitere Untersuchungen, dass der TI-Effekt im etablierten Modell reversibel ist und keine Methylierung der Testpromotoren hervorgerufen wurde.